[問題]請問如何將Bacillus進行原生質體轉型
【問題】:我先前有看過paper也有做過實驗,也有抽質體
但是跑出來膠的結果都是刷一條,
想請問如何確定plasmid 有轉質進入bacillus,
跪求高手幫忙......
【問題起因】:這是畢業論文的實驗內容,
小妹距離畢業時日不多,希望有神手能指點迷津
【個人看法】:目前我已經有作出轉型株,
有先以lysozyme方式打破細胞抽取DNA
但是跑出來的結果都是刷一條沒有單一band
【參考資料/連結】:
以下是我參考paper的protoplast方法
1.挑選單一菌落至10mL的PAB培養液中,於45℃震盪(150rpm)隔夜培養,
之後以1/100的接種量,接種至新的50mL PAB培養液中,
於45℃培養至OD600約1.5時,離心回收菌體。
2.將回收的菌體以5mL的SMMP buffer
(1M sucrose、0.04M maleic acid及0.04M MgCl2‧6H2O, pH 6.5)
及4x PAB等體積混合回溶,之後加入5mg的lysozyme,
置於37℃震盪(100rpm)水浴槽中反應,每隔15分鐘取15μL反應液,
以顯微鏡觀察其原生質體產生的情形。
3.觀察至99%的細胞形成原生質體後,即於室溫下以3500rpm離心10分鐘,
小心去除上清液,並以1mL的SMMP將回收原生質體回溶,置於4℃中備用。
4.進行轉形作用時先將適量的質體DNA與150μL置備好的原生質體混合,
再加入450μl的PEG溶液立刻小心混合均勻,置於室溫中反應2分鐘,
加入1.5mL SMMP buffer,混合。
5. 離心3500rpm 7分鐘,去上清液,
再加入500μL SMMP於45℃中震盪(100rpm)培養2小時,
取適量菌液塗抹於含適當抗生素的PAB平板,
於45℃培養48小時,觀察轉形結果。
再來這是我抽取質體方法
1.挑取單一菌落接種於含適量抗生素之NB培養液中,37℃ 150rpm o/n
2.取1.5ml菌液至微量離心管,離心3500rpm 10分鐘,收集菌液
3.取1.0ml TSE buffer(10mM Tris-HCl pH8.0 300mMNaCl 10mMEDTA),
離心 3500rpm 10分鐘,清洗菌體一次
4.將菌體懸浮於100ul solution A
(10mM Tris-HCl pH8.1 50mMNaCl 10mMEDTA 20%sucrose)中
並加入0.5mg lysozyme ,37℃靜置反應30min
5.最後加入200ul solution II
以下步驟如大腸桿菌質體抽取法相同
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