[求救] Ligation

看板Biotech (生命科學)作者時間14年前 (2011/09/13 12:35), 編輯推噓3(3012)
留言15則, 4人參與, 最新討論串1/1
Insert 大小為1.5k 已放入TA裡 Vector pcDNA3.1(+) 大小為5.5k 比較麻煩的是 Insert和Vector可以用的cut site有點複雜 → ---+-----+-[ gene ]-+-----+--- Insert-pGEM-T easy EcoRI BamHI Hind3 EcoRI------------+----+------------ Vector pcDNA3.1(+) BamHI EcoRI (G/GATCC)--17nt--(G/AATTC) 我以BamHI 和EcoRI作為連結處 Digestion protocol為 Insert(10ug~30ug) BamHI先切 1hr 再加入EcoRI 並補滿buf 再切2hr ^此步有先取1ul出來跑膠 確定有切完 Vector(10ug~30ug) BamHI+EcoRI 同時切3hr gel extraction > ligation (molar ratio=1:1, 1:3, 3:1) RT 3hr > transformation positive control丟約200ng 長滿長片 ligation p/c 用vector切一刀 丟40ng去ligation 約有500顆 但實驗組永遠都只有1~2顆的colonies 而且抽出來size都不正確 想請問這些實驗步驟中有沒有什麼問題? 會不會是Vector的兩個cut size太近 時間太短? 還是可能是Ligation步驟問題? 謝謝各位:) 祝大家實驗順利 -- ※ 發信站: 批踢踢實業坊(ptt.cc) ◆ From: 140.112.125.32 ※ 編輯: ararthur 來自: 140.112.125.32 (09/13 12:37)

09/13 13:43, , 1F
control用vector only看看自接比例
09/13 13:43, 1F
請問這裡是說用切兩刀的vector 還是切一刀的? 切一刀的有做過 約500顆

09/13 13:45, , 2F
長出來菌落太少 可以提高vector:inser到1:10
09/13 13:45, 2F

09/13 13:46, , 3F
ligation時間可作一組16度c overnight看看
09/13 13:46, 3F

09/13 13:47, , 4F
gel extraction完有再load一點去跑膠看看濃度嗎?
09/13 13:47, 4F

09/13 13:47, , 5F
你測DNA濃度的方式是什麼?有時濃度低估或高估會影響
09/13 13:47, 5F

09/13 13:48, , 6F
通常都是因為高估造成實際上vector:insert比偏低
09/13 13:48, 6F

09/13 13:48, , 7F
菌落就會長的少 所以這時候要確定濃度或者提高比例
09/13 13:48, 7F

09/13 13:49, , 8F
insert越大 膠體純化回收後需求濃度越高
09/13 13:49, 8F
※ 編輯: ararthur 來自: 140.112.125.32 (09/13 14:48)

09/13 19:55, , 9F
就是你VECTOR的部份 切兩刀的不要加insert 加一樣體積
09/13 19:55, 9F

09/13 19:55, , 10F
的水 一樣作transformation 看會長幾顆
09/13 19:55, 10F

09/14 19:34, , 11F
你的control根本在搞笑...
09/14 19:34, 11F

09/15 00:11, , 12F
是說丟太多嗎? 那時也沒有特別去dilute 就隨便取個.5ul@@
09/15 00:11, 12F

09/15 06:42, , 13F
這樣切不會把BamHI site切掉嗎在第二次切的時候?
09/15 06:42, 13F

09/15 09:12, , 14F
我以為應該是留下---/ +-----/ +-[ gene ]-+-----/ +---
09/15 09:12, 14F

09/15 09:12, , 15F
BamHI EcoRI
09/15 09:12, 15F
※ 編輯: ararthur 來自: 111.249.167.145 (09/15 09:13)
文章代碼(AID): #1ERjs3aC (Biotech)
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