[討論] in vitro system與細胞實驗 藥物劑量差異
由於最近在補一個藥物實驗的data
看到in vitro kinase assay覺得滿好玩的
就來嘗試看看 結果卻令人有點無法解釋:
Compound A在kinase assay可以拉出正常的inhibitor log曲線 換算回去IC50為17 uM
但在細胞實驗中 只要2 uM的compound A
即可對此kinase p-Tyr level及其下游蛋白磷酸化有很顯著的抑制效果
(IP及WB已重複多次)
令我疑惑的是 通常都是細胞實驗或動物實驗的劑量
會大於IC50 of kinase activity劑量 (這還滿好解釋的 像是half-life等等)
但現在情況卻反過來 原廠是建議可以調整ATP濃度看看 能不能把log曲線往左右移動
(已經試過調整kinase量,對求得的IC50沒有顯著差異)
跑去問藥理跟藥學的同學 她們說還滿常碰到這種情形的
也只能把這個data收起來或再repeat看看
想請問一下各位專家們,碰到這種情況該怎麼解釋
或是有可以改變的條件讓兩種實驗的濃度不要差太多呢?
感謝!
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我是用Progema的ADP-Glo system
簡易版步驟就是:
kinase + inhibitor + ATP反應
然後再加入ADP-Glo這個reagent去反應
最後加入reaction buffer去測冷光
所以可調整的變因大概都在第一個反應那邊
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這解釋也是有可能 但又要想實驗證明(默
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沒錯 這也是我覺得很恐怖的原因
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我第一次實驗先做了ATP conversion standard curve & 原廠建議的kinase量
發現偏高以後 將kinase量減半 其他條件相同 再做一次實驗 發現結果差不多
才致電原廠 並得到可以從ATP量下手的建議 XD
※ 編輯: waitingu (140.122.143.252), 11/12/2014 09:51:55
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