Re: western band反白
high background, 在非抗原的蛋白質容易出現反白的情況
簡單的例子就是 protein marker
我跑的膠用prestained protein ladder. 5 ul/well
抗體titer是用說明書上建議的
當exposure時間(我用ECL)過長時 marker的部份就會反白 非常清楚
可以檢討high background的原因
blocking solution, incubation time, antibody titer, exposure time...
specificity越低的抗體越容易出現high background
抗體濃度越高時亦然
※ 引述《KAEDERUKAWA.bbs@bbs.csie.ncu.edu.tw (uranff)》之銘言:
: > 這是因為抗體濃度的關係
: > 是不是自己製作的抗體
: > 通常要自己試一下
: > 這樣的結果應該是抗體濃度太高
: > 你可以先做一個實驗
: > 相同的sample用不同稀釋抗體濃度去試
: > 例如
: > 1:10000
: > 1:50000
: > 1:100000
: > 要看你反白的那次抗體濃度用的是多少 自己設計
: > 上面我說的是一抗的濃度
: > 你二抗的濃度就固定調成一抗濃度稀釋的五倍
: > 例如一抗
: > 1:10000
: > 那你二抗就調
: > 1:50000
: > 這樣做做看
: > 找出一個適合你protein的抗體濃度
: > 不過如果你抗體濃度稀釋的真的已經很高很高
: > 我建議要下降你的protein濃度
: > ㄧ般用到1ug/ul就可以了
: > 不用太高
: 我自己是用打兔子得來的血清IgG做Western
: 抗體濃度大約是1μg/μl,稀釋比例為1:500
: 用這個比例下去做,偶而會有這種band反白的情況
: 可又並非是每次都會這樣
: 另外不知道有用自製抗體做過的先進們有沒有碰過這個問題
: 我將血清以兩次protein G sepharose純化過
: 純化出的IgG與買來的抗體相比差不多純(直接一起跑SDS-PAGE之後染Coomassie blue)
: 之後我就一起收在4℃,有加0.05% sodium azide
: 以後就一直拿同一管出來做Western
: 可是最近幾天的Western做完之後呈色都沒有訊號
: 但是換了另外一管(一樣收藏在4℃),用一樣的稀釋比例去做就又做的出來
: 然而之後拿這兩管直接去跑SDS-PAGE卻又看不出先前我使用的那一管有degrade現象
: 這讓我覺得很奇怪,到底我的保存方式是不是不對?請大家指教
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