Re: [求救] 收medium去跑western,maker變型了!
※ 引述《wenhaoshen (wenhaoshen)》之銘言:
: 我有一個問題,就是我要收細胞分泌到medium的x152蛋白質,
: 經過用含10%FBS medium培養CHO-K1三天後,
: 收集起來,並用0.22 um filter過濾及濃縮後,
: 拿去跑western, 結果跑膠造成旁邊的maker嚴重變形變很細,
: 而且size不準,
: 而且有些抗體hybrid結果都沒有出來
: 我是推斷是serum造成的,
: 但是無法用無serum的medium去養CHO細胞,
: 因為細胞這樣會死掉,
: 請問有經驗的學長姐該如何解決呢?
看了你兩篇文章,總覺得你的實驗設計都怪怪的~~
首先,你必須在培養時把血清降到最低,或是在要收之前換成serum free的medium,
應該不會那麼快就死給你看~
要收supernatant還用到10% serum那有收跟沒收是一樣的~因為到時你收下來的東西
絕大多數都是serum裡的蛋白質~~
還有啊,我看不懂你過0.22是要幹嘛,做western又不需要無菌,用collen concentrate
後就可以凍存或是直接測濃度、處理跑膠了啊~分片段濃縮時就會loss不少了,之前還
跑0.22過濾會讓你更大量的loss~~
marker變形跑掉表示你的sample蛋白質太多或是你的SDS-PAGE濃度配太高、跑太快~都有
可能。
抗體HY不出來的確有可能是SERUM造成,可能就是沒跑開一大砣把它蓋住了,抗體當然
找不到目標囉。
先去掉你的serum的影響,然後盡量的去調整你concentrate的蛋白大小片段,盡量排掉
其他沒用的部分,然後再去試,跑western時smaple濃度不要太高,不要有空well(load
空sample loading dye)不要跑太快、調整sds-page濃度……等,你的這個實驗有
很多需要改進的地方。
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