[求救] 有關western blot 問題 請大家幫幫忙

看板Biotech (生命科學)作者 (人生就是挑戰挑戰)時間16年前 (2009/07/05 21:38), 編輯推噓5(5021)
留言26則, 7人參與, 7年前最新討論串1/1
大家好 因為工作所以開始接觸western blot 大約快兩個月 之前只有在教科書紙上談兵 現在用的protocol是實驗室建立起來的 當初有看實驗室的人做過 但是大約做了兩個月的我 一直有幾個問題 搞不定 弄的自己心煩老師也不耐煩 想請各位高手指點一下問題到底出在哪邊? 1.首先在收蛋白質部分 我收的量每次都低於200ug? 先講我的方法: 我將"10 cm dish" "八成"滿且細胞不是很大的dish,去medium, wash PBS,在去掉PBS,後加入1ml的PBS,刮下(有用顯微鏡確認都刮下) 離心5000rpm 5min,去PBS後依照pellet加入MENT+Protein inhibitor cocktail(1000:10)大約都加50-100ul並打很散,而後放在冰上每十分 鐘又去強力衝pellet,共30分鐘,而後甚至放到-80度冷凍15分鐘在解凍 (現在我還加上sonicate 10分鐘 每十秒休息五秒然後13000rpm 30分鐘 吸上清液(有小心不吸到pellet)只是有時候液面好像有一層膜,那到底 是什麼東西? 之後就2ulsample protein+ 18ul ddw +480 ul Bio-rad protein assay 測吸光值每次R大約在0.975-0.995(每次都做standard) 但每次我的蛋白質量都低於200ug.....真的很想哭 每次做三次就沒了? 到底問題出在哪邊呢,實驗室每個人也是這樣做 他們都可以收到500ug以 上,請大家幫幫忙 謝謝 2.再者更嚴重的問題是,到目前為止 我的tubulin 總是不會等量 真的除了手殘外 沒有其他原因了嗎?到目前不下跑過20多遍的western blot,但每次的tubulin都不 equal,所以每次壓出來想看的蛋白都無法比較,讓老闆非常不滿. 我還是把我的作法講一下 請大家提點一下,其中有幾個小問題 也麻煩大家解答一下 我會算好50ug蛋白所需要的ul加入4xdye,補lysis buff都到40ul離心,夾防爆夾煮沸 10min,放冰上,再離心,然後加入well內,問題來了,明明我每個sample理論上應該都是 40ul但是每次在pillet入well時都不到40ul,我問我同事他們說裡應該都超過,但為什 麼我會不足?(我有確定並沒有加錯或是沒有加到)所以到底為什麼會不足呢? 之後跑80V 5%stacking gel理論上應該我的loading的sample應該此時都聚集一條線, 而後才會進入10%的下膠但是我發現我們家跑的都有拖很長(大約3/4個well長度),一直 到下膠跑到最後的1/4處才會慢慢壓成一條線?請問這是正常的嗎?是哪邊出了問題? 這會影響到我的結果嗎? 之後就用300mA轉3小時然後blocking 1hr,wash three times,加入一抗4度overnight 隔天wash three times, 二抗一小時,wash theree times again然後ECL顯影 然後心情就開始不好了......因為tubulin都不equal(因為我要壓的有在20-30kb 所以沒壓actin 很感謝你把這篇文章看到這邊,如果你有任何想法或是哪邊有問題,我會馬上再解釋清楚 也希望你覺得我哪邊可以怎麼做 也麻煩你解答一下...十分感激你 謝謝大家 -- ※ 發信站: 批踢踢實業坊(ptt.cc) ◆ From: 123.205.33.179

07/05 22:22, , 1F
lysis br.加太少,會影響細胞lysis的程度,導致蛋白量少
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07/05 22:22, , 2F
你需要比較一下,對於10cm dish,其他人加的量
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07/05 22:25, , 3F
另外,打的太散,DNA沾黏的蛋白也會便多
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07/05 22:28, , 4F
sample dye沾黏tip的情形很嚴重,本來就會減少一些
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07/05 22:31, , 5F
300mA 3hr時間有點久,但如果你實驗室大家都麼做就沒差
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07/05 22:32, , 6F
40ul是全加嗎?還是取10ul分四片跑?
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07/05 22:34, , 7F
若是分片加,每管的蒸發率可能造成tubulin不一致
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07/05 22:35, , 8F
但不應該這麼大到影響定量,採用別的internal control?
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07/05 22:36, , 9F
比如說,看不同處理neural分化程度時,不適合用actin
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07/05 22:51, , 10F
我是每個處理50ug 所以弄成40ul到每個well
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07/05 22:53, , 11F
如果要做兩片的話我是各別加入50ug到兩個eppendorff
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07/05 23:09, , 12F
不好意思我有點不懂"DNA沾黏的蛋白"為何會影響蛋白質量?
07/05 23:09, 12F

07/05 23:13, , 13F
不同管的細胞核被打破的程度不一,因為你文中有提到你有用
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sonication
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就像抽plasmid時<
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有時過份trypsinized的cell culture也會看到黏在一起的
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細胞,這樣離心時,那些細胞或蛋白就一起被離掉了
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07/05 23:18, , 18F
plasmid那段為錯推文
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07/05 23:21, , 19F
有蓋緊管口煮完後離心照理說應該體積不變吧?
07/05 23:21, 19F

07/06 03:19, , 20F
sample protein 取的量有沒有可能太少 導致定量不準
07/06 03:19, 20F

07/06 07:09, , 21F
我同事是加2ulsample protein定量 他們的定量都是OK...
07/06 07:09, 21F

07/06 16:13, , 22F
離心5000rpm??? 通常離心細胞大概都2000rpm上下
07/06 16:13, 22F

07/06 16:14, , 23F
你的是什麼細胞呢?
07/06 16:14, 23F

07/07 11:54, , 24F
樓上+1 離心細胞通常是500g 請確認你rpm換算過去沒超過500
07/07 11:54, 24F

11/11 01:34, , 25F
我是每個處理50ug https://daxiv.com
11/11 01:34, 25F

01/03 16:57, 7年前 , 26F
離心5000rpm?? https://muxiv.com
01/03 16:57, 26F
文章代碼(AID): #1AKApC-2 (Biotech)
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