[求救] DCFDA染劑測細胞ROS 但control組卻有螢光

看板Biotech (生命科學)作者 (silversky)時間13年前 (2012/08/07 22:37), 編輯推噓2(2011)
留言13則, 6人參與, 最新討論串1/1
小的是使用貼附型HSC-3細胞進行實驗 由於聽說medium及trypsin會影響測出來的螢光表現 所以有幾個步驟是特別去除medium跟trypsin的動作 我的實驗步驟如下: 1. 細胞總共分為四組: 不染染劑, negative control, positive control, 藥物組 2. 藥物組已事先加藥處理24小時, 而positive control則是使用550uM的H2O2處理一個 小時(in medium) 3. 將四組的medium吸除 加入20uM的DCFH-DA染劑 in 含5% FBS的PBS (不染染劑組不加 DCFH-DA) 37度C 30mins 4. 吸掉含染劑之5% FBS PBS 使用PBS wash 5. trypsin打下細胞 加入含0.2% FBS PBS的離心管中 6. 離心完後去上液 回溶 1ml PBS 上機 (流式細胞儀) 不過上機後的Data 將完全不染的組別螢光調至約10^0處時 發現光上negative control 螢光強度就爆衝到約10^3 而之後上positive control, 加藥組 螢光強度也與negative control幾乎相同 請問發生這種問題是因為染劑問題嗎? 還是因為我的實驗中有哪個步驟出現錯誤呢? 因為negative control就有這麼強的螢光表現實在不太尋常... -- ※ 發信站: 批踢踢實業坊(ptt.cc) ◆ From: 218.173.33.122

08/07 23:24, , 1F
請問有分活死細胞嗎?死細胞的話會有訊號出現
08/07 23:24, 1F

08/08 13:53, , 2F
沒有特別分耶!
08/08 13:53, 2F

08/09 03:31, , 3F
為什麼完全不染的螢光要調到1阿? 不是應該直接拿Control
08/09 03:31, 3F

08/09 03:32, , 4F
將訊號調到10^2來看增加還是減少嗎?
08/09 03:32, 4F

08/11 16:47, , 5F
活細胞死細胞沒差~是要進到細胞才會有螢光 (DCF-ROS)
08/11 16:47, 5F

08/11 16:48, , 6F
頂多是怕 background, washing 要乾淨
08/11 16:48, 6F

08/11 16:49, , 7F
也要看你細胞代數, 數量, 還有穩定度 才不會有過多ROS
08/11 16:49, 7F

08/11 16:50, , 8F
positive 太低 可能是下太猛了掛光光 Dye 進不去
08/11 16:50, 8F

08/11 16:52, , 9F
H2O2 是一個很好的 positive
08/11 16:52, 9F

08/11 16:55, , 10F
FBS 不影響
08/11 16:55, 10F

08/11 16:56, , 11F
Medium 我用 DMEM F12 也不影響
08/11 16:56, 11F

09/05 00:10, , 12F
DISH或者FLASK本身就有螢光喔~建議seeding在玻璃上!
09/05 00:10, 12F

06/13 18:49, , 13F
請問大大之後有找到問題點嗎~? 我最近也為此所苦...
06/13 18:49, 13F
文章代碼(AID): #1G8IX7Q- (Biotech)
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