[求救] western ECL反應條件

看板Biotech (生命科學)作者 (Chia)時間13年前 (2013/01/21 22:38), 編輯推噓6(6025)
留言31則, 8人參與, 最新討論串1/2 (看更多)
有關western最後一步以冷光呈色劑ECL反應,我們家得做法是: 洗好2抗的膜會放在已剪開得自黏式塑膠膜上, 然後以p1000 pipetman吸取3ml得ECL試劑來回均勻淋在膜上, 最後把塑膠膜蓋上,反應2~5分鐘後,將ECL試劑擦拭乾淨, 再使用冷光照相系統(UVP)偵測。 ~問題來了~ 老師每次看到結果圖都會嫌棄我們是不是ECL沒有淋均勻= = 操作給老師看之後,老師說我淋太快了這樣不行。 因此第二次照着老師建議得速度做了一次,覺得還是很難控制> < 結果還是會有某一區塊比較暗的情形,好像那一塊淋到得ECL比較少的樣子 我們家使用得ECL試劑是millipore的2合1那種。 我想請問大家ECL也是用淋得嗎?有什麼訣竅可以做好這一步? 不然辛苦鑄膠跑膠轉印完hybrid完抗體, 結果敗在最後一步實在很扼腕也很打擊信心呀T T 另外就是我有看過別的實驗室做法, 是像搖抗體那樣,把膜放在ECL裡面搖(反應)。 我想問問版上是否有人也是這樣子做得呢?想要參考看看這樣做該如何抓條件! 謝謝各位耐心看完我打得東西。 雖然WESTERN實驗變異很多,但因為這一步一直被老師complain, 我又超無解得,實在很苦惱。 有搜尋過版上western相關文章,但發現大家討論照不出東西比較多, 還有跑膠轉印條件之類得..... 最後希望大家實驗都能夠順利啦!謝謝各位^^ ————————————做個分格線———————————— 圖片檔案網址在這邊,如果看不到請再和我說,謝謝各位(感恩) http://ppt.cc/BT4h ◆ From: 219.84.253.154

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你可以先將A,B液混合(使用前), 膜先放在面紙吸到無水漬,
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再將膜移到乾淨的容器或保鮮膜上, 淋上ECL, 將膜完全蓋滿,
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反應時間後, 可以再準備放到面紙上吸乾到無水漬,就封到膠膜
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上述流程,已經好久沒用.現在都是直接在容器內呈色就去照相.
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3ml,這至少可以覆蓋8X6membrane好幾倍,你的很大張?millipor
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那一套反應時間應該1min就很夠了,反應太久容易燒掉反白
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沒圖,如果你的多餘ECL水滯有吸掉,說不定是2抗造成訊號不均
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用搖的 8x6 cm 應該只要A+B 1~1.5 mL就搖得起來
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這步我們通常用手搖 約3min左右
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拿個小盤子先把膜擺好後盤子斜個角度淋上去
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在吸取聚到盤子一角的ECL重複淋 要讓ECL均勻流過
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時間控制在30s-1min 之後把膜夾起來舔擦手紙 正反
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面都舔 保持濕潤但不要有流動的形狀就好
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而且M牌反應速度很快很強 泡到5分鐘都反應完了吧..
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to:blence 我使用的膜是9.5x5大小得。你說沒圖是指實驗結
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果圖嗎?
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我們在做的時候真的有反應5分鐘耶~主要會去調整曝光時間
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除非真得太強,就會知道ECL不能反應那麼久。這樣抓條件得
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可以附個圖嗎?
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請問用搖的時候是放在小盒子裡面搖還是封口袋之類的東西?
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※ 編輯: domoto01 來自: 140.136.181.22 (01/23 12:29)

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PCR盒的蓋子很好用.
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昨天學妹試做了,她用10ml重複使用,反應時間都是5min,
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照第三張的時候就已經有點弱了。和老師講的時候,他說ECL
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不要重複使用呀...今天下午meeting老師說要來討論ECL怎麼
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這一步驟怎麼做來減少實驗誤差= =
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沒重複使用過耶,A+B 大概1.5 ml用手搖+1
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我的膜是9.5*5,1.5ml量好少膜根本淹不過,這樣搖會反應
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均勻嗎?請問shin大的膜大小是?
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我也用這款 基本上沾一下就可以去照了
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怕乾掉就在多滴幾滴在上面 最好是可以讓膜上一直有
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ECL試劑
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文章代碼(AID): #1G_LBCsj (Biotech)
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