[求救] 有關gene deletion kit實驗
目的是為了替除掉特定的目標蛋白。
使用的菌種是E. coli K-12
所使用的KIT是Quick & Easy E. coli Gene Deletion Kit
http://www.genebridges.com/products/quick-easy-e-coli-gene-deletion-kit
基本上我都按照上面的protocol去做,
前面送重組質體的部分,
已經很順利地送了進去,
也有作對照的部分,
原本的菌種是沒有抗amp抗性的表現,
培養時溫度也都控制在30度,
也有拿溫度計做校正。
主要是在第二次電穿孔時,
送進去PCR好的片段進入,
這個片段有先跑膠,並切膠純化出來。
使用的純化KIT是 GeneMark的DNA Clean/Extraction KIT
也全部都按照此上面建議使用,
Elution solution也是使用KIT所附上的。
測量OD260時,
因為濃度過低,
添加的體積約為3~6ul的使用。
電穿孔也是按照原本protocol所述1350V,
但是因為我們的機器沒有辦法調整ms的時間,
有時會到10ms,
主要是做了數次後,
再塗盤後,
還是都沒有clone的產生。
請問,
會是我的primer設計有錯誤?
還是我的PCR條件有問題?
我的PCR是使用ACCU DNA POLYMERASE,
也有請教過有含有高保真性質的能力。
條件是
一開始 5分鐘 95度,
接下來30cycle
95度30秒
60度30秒
70度2分鐘
之後 70度7分鐘
跑膠後,
在大約1.5K之上有一條BAND產生,
但是在低於0.5K之下有一團模糊的團塊。
我有針對這個部分做了切膠。
只是之後濃度頗低,
所以添加的體積略高於原廠的建議值1~2ul。
想請問使否會有所影響?
PCR的條件要在改變?
還是我原本的primer設計失敗?
辨識位置的50bp過短?
請問我這樣還有哪裡要改善的或是有重大問題?
或是請教大家有無好的濃縮片段方式?
感謝大家了~~
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