[求救] 以plasmid為template 的 PCR方式
大家好~
目前我的實驗是重組E.coli的特定蛋白,
做修改及探討。
使用的KIT是
http://www.genebridges.com/products/quick-easy-e-coli-gene-deletion-kit
在之前送進了會產生重組蛋白的質體,
也做過特異性比對,
原本的菌株是沒有抗AMP抗性的,
問題在於送進第二段的PCR產物後,
幾乎完全沒有clone的產生。
我所使用的是根據KIT上建議的primer設計,
是在真正參與PCR作用的20個bp的primer上在增加50bp去做兩端辨識交換的位置,
所以會產生約70bp的primer,
而所使用的template是根據KIT給予的plasmid,
所使用的是ACCU DNA polymerase,
10X Buffer 5ul 最終1X
10mM dNTP 0.5ul 最終0.1mM
Primer 各1ul 最終0.2uM
template 1ul (KIT表示濃度50ng/ul)
ACCUpolymerase 0.5ul
滅菌過 二次水 補足50ul
也有試過KOD-PLUS-,
10X buffer 5ul 1X
2mM dNTP 5ul 0.2mM
25mM Mg2SO4 2ul 1.0mM
primer 各1.5ul 0.3uM
template 1ul (KIT表示濃度50ng/ul)
KOD -plus 1ul
滅菌過 二次水 補足50ul
PCR條件為
95度 5分鐘
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95度 30秒
60度 30秒
70度 2分鐘
-----
以上30 cycle
70度 10分鐘
4度保持
問題在於出來的濃度都不高
電泳跑膠後,
根據mark似乎是正確的位置,
只是在0.5K以下的位置有一團模糊的團塊,
也有以KIT做完切膠純化後,
以電穿孔方式送入。
發現可供挑選的clone比預期少很多。
篩選用抗體是kanamycin 15ug/ml,
挑選完後,
抽完DNA後已PCR方式去分析發現,
band依舊並無改變,
目前似乎最大的問題是在PCR的產物上有無正確的產生我要的產物。
請問 我該如何以plasmid為模板正確的設計出我要的PCR產物?
還有哪些條件需要設計或改變的?
感謝
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