Re: [討論] Membrane protein extraction方法(300P幣)
我最近也在收membrane protein
檢體是rat spinal cord
是買Pierce 的mem-per reagent 那組kit
做到最後一個步驟,離心完,
也是分三層, 上層是hydrophilic phase中間是一個很不明顯的interphase
下層是hydrophobic phase
(應該跟原po是一樣的分層?)
我要的是最下層的部份
它看起來一副就是充滿detergent的樣子
specilaist是跟我說她其他的user收完後直接拿來做western blot
但我照做了,最後看起來也是跟原po的RhoA一樣
看說明書上是可以用pierce的某kit透析掉detergent
可是這樣又要買東西了 ^^||
除了想問跟原po一樣的問題(去除detergent)
還想問問有哪位也用過這組收膜蛋白的kit,之後做western的??
做出來也會這樣嗎?
要如何解決這樣的問題??
或是在配running用的檢體時,用PBS或TBS去調整濃度,讓detergent稍微稀釋掉一些??
謝謝大家~
※ 引述《waitingu (Phil-Ku)》之銘言:
: 最近的實驗必須要看
: non-receptor tyrosine kinase在不同條件下被recruit到membrane的情形
: 閱讀了一些期刊後發現,普遍的做法是用Triton X-100 + sucrose gradient分層
: 此作法通常需要超高速離心
: 但好像也有一種做法是用Triton X-114去做分層,但不需要超高速離心
: (由於老師一直恐嚇說如果超高速離心沒處理好,會提早畢業但沒證書,因此能儘量不用
: 就不用那台老機器),因此...
: 1. 想請問一下,這兩種做法的差異性在哪?
: 2. 如果是Triton X-114這種做法,所看到的分層現象,應該是
: (上層) 水層 (中間)Sucrose cashion (下層)detergent phase
: 還是順序有所差別呢?
: 3. 我試了幾次 Triton X-114作法
: 發現可以抽出membrane-associated protein (例如Rho)
: 但SDS-PAGE跑出來的band卻會smear(如圖
: http://img545.imageshack.us/f/25531824.jpg/右邊那條)
: 推測可能是detergent含量太多,但如果用Acetone沉澱後,蛋白會無法回溶
: 請問版友們對去除detergent步驟是否有好的建議?
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