[方法] 請問flow做cell cycle 細胞shift分析
如題,最近新接觸一個藥物,加入細胞後24hr再以flow分析cell cycle。
試驗流程如下:
1.Seeding 5*10^4/well in 12 well plate.
2.Drug-treated for 24hr.
3.1x Trypsin then collect cell, PBS wash 3 times.
4. 70% EtOH fix for 24 hr at -20 degrees Celsius.
5.PBS wash 3 times.
6.Staining with 20 ug/mL PI, 30ug/mL RNAse, 0.1% TritonX100 at RT 30 min.
7.Flow.
結果因藥物影響,造成細胞shift,導致control為基準進行gatting時,結果落差太大,
與實際情形不符。
如附圖,以control為基準拉出4個phase,但可看到處理組因shift,S-phase吃到G0/G1-p
hase導致百分比上升,但這個上升是不符合實際情形的。
https://i.imgur.com/iyFMJRA.jpg
因此想請問各位因應這種情形會如何分析。
或有什麼改善方法可以方便提供參考,謝謝。
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※ 發信站: 批踢踢實業坊(ptt.cc), 來自: 49.216.131.178 (臺灣)
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06/22 17:45,
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目前也不清楚,但確實由其他實驗推測會影響DNA replication。
推
06/22 20:04,
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感謝回覆。調整peak可能不太行,因為如果範圍比較小,例如S-phase怕會有誤差,老闆
可能不接受。另外就是如果是多濃度/多組別,若每個都要手動,同時得紀錄百分比,這
個做法可能不切實際。
※ 編輯: maurice9325 (49.216.131.178 臺灣), 06/22/2022 21:03:05
※ 編輯: maurice9325 (49.216.131.178 臺灣), 06/22/2022 21:04:27
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06/22 22:06,
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看不出正相關,只知道一定濃度以上即會導致shift。有懷疑過是否與藥物處理後pheboty
pe改變所以導致shift,但無法確定。
推
06/22 23:40,
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有想過,但如同上述,如果每次實驗組別太多,會花太多時間在後端分析與記錄。且曾經
遇過reviewer挑戰,以此方法不夠客觀,調整不同組別參數以分析自己想要的data也不符
合flow的精神。
推
06/23 00:27,
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因為是新藥開發與測試,所以沒有結論。目前就知道會影響DNA的function,如上述DNA r
eplication;而最後一定可以想像細胞就是死了。
另外回覆我們曾經有與專員討論過,例如:
前段的部分,固定細胞數量後再fix and staining但無效。
或上機時以不同電壓微調再收data,但此方法同收完以後再調整有相同的問題,就是一樣
組別太多無法操作且不太客觀。
或是輸出raw image利用第三方軟體把shift的位置拉回來疊一起,再進行area的計算,但
我目前沒有找到相關軟體可以分析。
所以想請問是否有大大有類似的分析經驗、或方法上的改善。謝謝。
※ 編輯: maurice9325 (49.216.131.178 臺灣), 06/23/2022 07:51:21
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好的,感謝諸位,我會試試看。另若有其他大大另有不同處理/分析方法,仍請不吝提供
。謝謝。
※ 編輯: maurice9325 (49.216.131.178 臺灣), 06/24/2022 10:04:41
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