Re: [問題] 有關Real-time PCR 數據分析
※ 引述《ophisoka (Hisoka)》之銘言:
: 我現在手上有一種未知功能的蛋白質
: 已經有這個蛋白的 KO mice
: 老闆要我取 wild-type and KO mice 不同器官的RNA跑RT-PCR
: 比較相同器官中 WT and KO mice 這個蛋白基因的表現量
: 但跑完後我不清楚數據要如何分析
: 因為沒有一個 wt and KO 都可以用的標準值
: (我目前用的算法是把其中一個器官當1 但是KO也這樣算好像就不對了 因基準點不一樣)
: 有沒有什麼算法是可以取所有sample的絕對值(control是GAPDH)
: 然後可以做出WT and KO 目標基因表達性差異的圖
: 還有 我wt 已作3重複,要如何把3次統合起來
: ※ 編輯: ophisoka (140.123.186.178), 11/26/2014 16:47:30
很多人是用你要看的基因,跟GAPDH算出差值
用Relatvie的概念去做Normalization
但我習慣以下方法:
1. 先把GAPDH在sample中的Ct值 放在一起看 是否差不多?
一般來說Ct值不會差很多,除非你這個蛋白會直接影響到跟cytoskeleton相關的
pathways,若在確定不會影響,還差很多,那就手有問題,要重做.....
2. 利用全部samples的 GAPDH的平均值來算出每一個sample要調整多少值
利如 (由左到右 分別3個WT, 3個KO GAPDH的Ct值):
15 14.5 15.5, 14.5 15.5 15 --> 平均15
scaling: 0 +.5 -.5, +.5 -.5 0
3. 你要看的基因就照這個scaling factor增減
4. 這樣子你就不用跟GAPDH去先做一個Relatvie的差值,同時也先檢查了你這次手穩不穩
5. 調整好後,把你要看的基因,在WT中的平均Ct值算出來 得到 Mean.WT
把每個sample中的基因Ct值,都去減這個Mean.WT
你可以會得到 +.1 -.2 -.1, +8 +8.3 +7.8
這時候你就要用 2^-(上述數值) (為什麼要代負號知道吧?Ct越高 表達量越低)
Ratio: 0.933 1.149 1.072 0.004 0.003 0.004
最後若為3個biological replicate 就是畫 mean +- S.E.M, tech. replicate 為S.D
6. 在是biological replicates的情況下,可以再做T-test
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