[討論] His-tag protein 純化問題

看板Biotech (生命科學)作者 (專注)時間16年前 (2009/09/03 17:55), 編輯推噓5(509)
留言14則, 3人參與, 7年前最新討論串1/3 (看更多)
大家好 最近都在做蛋白質純化 使用的是 Ni-NTA 來純化帶有 His-tag 的protein 原理和實驗方法我都有從網站上的protocol搞懂了 也有爬過文 目前比較困擾我的事情是 流速會越來越慢......有時候甚至就塞住了 = = 我們家使用的是自己packing膠體 我有照學長說的 每次使用前pipette一下讓他重新packing 以免久了膠體會結塊容易塞住 也照protocol說的 先用水洗掉20%酒精 再用10 mM imidazole 平衡 避免沉澱產生 然後我濃縮置換好的sample在過column前也有過0.45 um膜 以免雜質堵塞膠體 但有時候還是會流速越來越慢 剛甚至在水wash的時候居然就塞住不動了 = = 所以想請教各位前輩 還有什麼可能造成堵塞呢? 我才沒用超過3次 之前的經驗大概流速會是 400~600 uL/min 請大家給我一點建議吧 謝謝 -- ~老化的四個徵兆~ zzzz * \○/    (○ └□ " ○□═ □   □> √√ ╦══╦ ∥   |\ 坐著一直睡 躺著睡不著 舊的一直提 說過就忘記 -- ※ 發信站: 批踢踢實業坊(ptt.cc) ◆ From: 140.112.74.19

09/03 18:14, , 1F
膠體的說明書應該有clean up的指南吧
09/03 18:14, 1F
我們家的膠體不知道是幾百年前買的......沒有說明書 我有看我找的 Invitrogen 和 QUIAGEN 似乎沒有提到堵住的可能原因和處理方法?

09/03 18:33, , 2F
將破好菌的粗菌液 以12000~14000rpm 離心 至上清液可被
09/03 18:33, 2F

09/03 18:35, , 3F
0.22um的小飛碟 過濾。
09/03 18:35, 3F

09/03 18:37, , 4F
若無法完全過濾,則繼續離心。 以上是我的方式 參考看看
09/03 18:37, 4F
我是以Pichia生產胞外蛋白 不用破菌 所以離心收上清液後就濃縮 置換buffer 過 0.45 um 之前過 0.22 um 覺得跟 0.45 um 差異不大 所以後來都用 0.45 um

09/03 18:39, , 5F
另外,將管柱先以水流看看(不含resin)是否已經被堵住
09/03 18:39, 5F

09/03 18:42, , 6F
若堵住,在管柱可容許的條件下,用力清洗
09/03 18:42, 6F

09/03 18:44, , 7F
讓管柱 跟 剛買來 沒用 過一樣的順暢
09/03 18:44, 7F

09/03 18:45, , 8F
我常用是用輪流用清潔劑、95%酒精 去超音波震盪
09/03 18:45, 8F
喔ˊ 這的確有可能 好我會試試看 謝謝你

09/03 18:47, , 9F
若是DNA的話,好像先前版友有提到,用DNase去處理
09/03 18:47, 9F

09/03 22:11, , 10F
1M NaOH -> binding buffer -> 1.5M NaCl ->ddH2O 大致
09/03 22:11, 10F

09/03 22:12, , 11F
體積我都抓5V 試試囉
09/03 22:12, 11F
這是指clean up 嗎? 使用時機是......? 而且用NaOH wash 的話要調回pH不是會用到很大量的buffer嗎? ※ 編輯: littlelizard 來自: 61.224.33.17 (09/04 01:50)

09/04 04:14, , 12F
液體都是流過去殘留很少 pH還好吧 最後一步是大量的ddw
09/04 04:14, 12F

11/11 01:43, , 13F
0.22um的小飛碟 https://daxiv.com
11/11 01:43, 13F

01/03 17:00, 7年前 , 14F
若是DNA的話,好像先 https://noxiv.com
01/03 17:00, 14F
文章代碼(AID): #1AdvAgFM (Biotech)
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