Re: [求救] t a clone 問題
要說的東西太多了,於是索性回文一章。
1. 5'-end phosphate group
你的 PCR product 肯定没有。
至於 vector,要看你手上的 datasheet 是怎麼寫的。
没有 5'-end phosphate group, 你加 ligase 也没用。
要是 vector 有 phosphate group,會大增 vector 自接的可能性。
我以前用過的是 pGEM-T 系列來做 T-A cloning,
上頭的 protocol 有說可以不必再進行 vector 的 dephosphorylation,
顯示 pGEM-T vector 上是有 5'-end phosphate group 的。
它是說 backgroup 低,但低到多少,似乎没提。
Insert DNA 可以在量產並純化後,拿 T4 polynucleotide kinase,
在 5'-end 進行 phosphorylation。
如果你們的 protocol 没有進行過修訂,那表示以前有成功過,而且可
能經常成功,
那表示你們一直使用的 vector 應該是有 5'-end phosphate group 的。
然後再看看你的結果描述,那個 background 有點高……
2. blunt end ligation
這是另一個建議。
以前做的是切 pGEM-3z,在 SmaI 的 RE site,再 dephosphorylated。
而 insert 一律 PCR 量產純化後做 5'-end phosphorylation。
實驗室的處理過的 pGEM-3z vector,放在 -20℃ 超過五年後使用一樣
没問題。
作 blunt-ligation,我常加 PEG (final: 5% w/v),但加了 PEG 就
不能做 heat-inactivation,所以,有時候這兩者會換著用。
3. 挑 colonies
以前挑 colonies,一定是確認有 insert 後才送定序。那個價錢差老
多了。除非 insert 長度太短,否則挑菌養養,跑 gel 看看有没有 band
shift 現象,也就是和 vector alone 的 clone 進行 gel 位置的差異比對。
你的 vector size 才 2.7 Kb——唔,和 pGEM-3z 差不多嘛——
insert 就有 1.7 Kb,那差別非常大,在 gel 上是一目瞭然,用不着拿
RE 切就看得出來。
趕一點的,一大早養菌,傍晚就拿得出結果,可以準備拿可能的 clone
去定序。要不然,用 tips 挑 colonies,一邊 PCR 等結果,一邊拿 tips
去養菌……
像是你在做的,如果要挑的菌太多,那用 colony PCR 會比較節省時間
没錯。但是 colony PCR,裡面東西太髒,如果 PCR condition 和 primers
不太好,那很容易誤判。你可以說明你在 colony PCR 用的 primers 是什麼
嗎?還有你 colony PCR 的 condition?
4. Ligation
Ligase 很貴的,看到你文章的內容,我還以為你一共加了 4ul 的 ligase。
一般我都只用 10 ul 來作用,然後 transform 時全下了 (約 100 ul 的
菌)。你拿 20 ul 作用,只取 5 ul 做 transformation,那剩下的是要
拿來幹什麼?拿來下次 transform 嗎?你覺得差不多三倍體積,結果會
差很多嗎?
T4 ligase 在作用完後,我們都會用 65℃ 來 heat-inactivation,除
非還另外加了 PEG。
T4 DNA ligase 因為頗貴又很脆弱,所以,剛買來時,我們實驗室一定
取冰過的、並且編號過的 vials,以 4 或 5 l 分裝冰入 -20℃ 冷凍保
存,要使用就登記依序開瓶。
5. 換 DNA polymerase
你既然有了已加 T-tail 的 vector,何苦還花時間自己在 PCR product
上加 A-tail?這個多出來的一步,還指不定是你 construct 的 rate-
limiting step 呢。
用(買?)會加 A-tail 的 DNA polymerase 吧。反正你現在的要求是要
先接進東西。我記得一般 Taq 好像都會加 A-tail,但量產時有頗高的
SNP 出現?但出錯機率其實没想像中的高,能高到 1/1000 就要偷笑了。
就算出錯,可以再設計個 site-directed mutagesesis 把它修正回來,
頂多是多買一到三組 primers,比你一直搞半天的想塞卻塞不進東西好
太多了。
以上是我的意見,希望能幫得到你。
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