[求救] 有關gene knockout-使用sacB基因篩選疑問
各位版大好,小的目前在做的是要將vibrio屬的細菌做gene knockout
由於是knockout新手 還請各位幫忙看看是不是有哪部分的思考出錯了QAQ
使用的donor strain是E. coli S17-1 自殺載體的部分是用pk18mobsacB
目前做到的部分是
透過PCR將目標基因的上下游各1000bp 接到pk18上後 轉型至S17-1內
之後將S17-1和vibrio隔夜培養的菌液1:1混合
塗抹在TCBS+kan(30 ug/ml)培養基上培養O/N
成功生長的是所謂的單交換成功吧?
因此我挑選單一黃色菌落
劃線分離於TCBS+10% sucrose 培養基上
依我之前看的paper理解
長出來的菌應該會是同源重組雙交換成功的菌(kan敏感以及sucrose抗性)
但隨後我將colony劃線分離於LA+kan 以及 LA+10% sucrose
結果兩者都有菌落生長
然後我將LA+10% sucrose上的菌去做目標基因的PCR
發現基因還在 代表我knockout 失敗
這邊我疑惑的點是
如果沒有交換成功 菌體內plasmid上的sacB不是應該還存在嗎?
那又為何會在sucrose plate上生長呢?
然後我將LA+kan上的菌用LB+10% sucrose培養 過了三天了 還是很清澈
這樣是表明其實sacB是有作用的@@?
(當初我有將S17-1含pk18 拿去劃線在LA+10% sucrose plate
結果長得好好的 因此我才懷疑我的sacB是不是沒有作用?)
假設sacB有作用的話....那有什麼辦法可以增加他交換的機率嗎?
又或者 一開始單交換那裏根本沒有成功?
菌株會有kan抗性是因為plasmid在裡面但是並沒有嵌上chromosome?
以上 打得有點混亂 不好意思
ps.建構好的pk18 我一直沒辦法PCR出我插入的2000bp片段
可是分別1000去PCR(分別使用上游跟下游的primer) 卻都有產物
讓我有點困惑(使用的溫度條件都一樣 55度 10 cycle -> 58度 20 cycle)
各位有什麼建議歡迎提供> <
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