Re: [求救] cloning

看板Biotech (生命科學)作者 (far away)時間18年前 (2007/02/27 18:43), 編輯推噓0(000)
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※ 引述《Adler (Adler)》之銘言: : ※ 引述《cayumi (far away)》之銘言: : : Promega的enzyme我沒用過 我只用過TAKARA 和Bio-lab(NEB)的enzyme : : Promega的的T4 ligase 他本身附的是10X buffer : : 他們公司另外有出一種 2X rapid ligation buffer,我是都用這個 ligation buffer : : 我ligation的方法是 insert: 8μl : : vector : 3μl : : 2X buffer:12μl : : ligase: 1μl : : 置於16度c水浴槽(or 4度C)作用至少16個小時以上 : : 以heat-shock的方法做transformation : : 我們家是用GeneMark的elution kit 個人認為滿好用的 : : 我plasmid都是用一般傳統的mini-preparation抽的 : : 可以踹看看用3%的gel(注意3%很容易就凝固了) 跑100V 40分鐘 : : 所以你vector有做CIP處理嚕!? CIP處理時間太久會影響到你ligation喔 : : 抗生素沒用錯吧 有看過很天兵的朋友用錯抗生素 == ==+ : : 這個我覺得有點怪怪的 應該只會出現single band吧,不應該有連續的band吧 : : 可是照理說用Kit抽應該不會有RNA的干擾才對,可以放張電泳圖嗎!? : : 還有elution完後有load 1μl(怕太淡可以load 5μl)下去跑電泳check嗎!? : : 不久前我們lab的學妹要把100bp左右的片段接到7 kb的vecor上 : : 我是敎她insert和vector都分別用NEB的enzyme做double digestion : : 用100V跑3%gel 40分鐘,elution : : ligation的條件就如上述所說的 做個兩次就出來了 : : 你在踹看看吧 : : 另外問一下,你用的切位是TA-vector本身的切位,還是你自己在primer上設計的切位!? : 我是用我自己在primer設計的切位 那如果是這樣的話 你可以用含你的insert的plasmid(應該有定序過,確認序列無誤吧!?)當作 DNA template 用"好一點"的taq(ex:takara 的ex-taq)做pcr primer就用你有設計切位的primer,總體積的話30-60μl皆可 pcr跑完之後,pcr product直接用1% gel去跑電泳,跑完之後做elute elute完之後的product,下個10 or 20 μl去做digestion,之後再elute 雖說pcr可能會有base出錯的機會,但是若你taq用好一點,或是你用有pfu的taq 56bp應該是不太有機會出錯的 : ㄜ...我之前說的連續的band,是指它是一整片,由一百分佈至其下皆有 那就很怪啦 電泳圖應該是長成這樣子吧 marker --- ----- vector 100bp --- ----- insert 一整片我覺會不會是RNase沒處理完全而殘留的RNA呀 你plasmid抽完之後load個1-5μ去跑電泳 如果100bp附近有亮成一片的話 那個應該都是RNA啦 : 可能造成你的誤會了... 抱歉..@@ : 切RE的gel我沒有照像耶...抱歉 : 我會用你的方法再試試的~^^ 謝謝你~ : ps.抱歉這麼晚才回...@@ -- 心一但開始動了,與沉靜便劃不上等號........ -- ※ 發信站: 批踢踢實業坊(ptt.cc) ◆ From: 140.112.52.141
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